ใช้ C-reactive protein ประเมินสัตว์ป่วยเบื้องต้น

 เขียนโดย โฮเซ เซรอน (José Cerón) และ แอสตา ทวาริโยนาวิซูเต (Asta Tvarijonaviciute)

หากคุณยังไม่แน่ใจว่าจะใช้การตรวจ C-reactive protein อย่างไร? บทความนี้มี 7 แนวทางสำคัญที่จะช่วยให้คุณนำไปประยุกต์ใช้ได้อย่างสำเร็จในการตรวจบนคลินิก

 

 

Reading time 5 - 15 min
C reactive protein

ประเด็นสำคัญ

Group 15 1

C-reactive protein (CRP) สามารถจัดได้ว่าเป็นทางเลือกแรกๆ ใช้เป็นประจำในคลินิกสัตวแพทย์ทั่วไปได้ในหลายสถานการณ์ ในกรณีที่วิธีการทดสอบได้รับการตรวจสอบความถูกต้องอย่างเหมาะสม

Group 15 2

ไม่เพียงใช้เพื่อตรวจพบการตอบสนองต่อการอักเสบเท่านั้นแต่ CRP ยังช่วยในการวินิจฉัยสาเหตุที่แท้จริงของโรคได้ด้วย

Group 15 3

ในภาวะที่มีการอักเสบ CRP มีประโยชน์อย่างยิ่งสำหรับการติดตามผลการรักษาและการคาดการณ์การเกิดโรค

Group 15 4

ค่าของ CRP ควรตีความในบริบทของภาพทางคลินิกทั้งหมดและข้อมูลอื่น ๆ ที่มี รวมทั้งควรพิจารณาร่วมกับการวัดโปรตีนระยะเฉียบพลันชนิดอื่นถ้าเป็นไปได้

บทนำ

 

C-reactive protein (CRP) เป็นโปรตีนระยะเฉียบพลัน (Acute phase protein; APP) ซึ่งเป็นคำที่ใช้เรียกโปรตีนที่มีความเข้มข้นเปลี่ยนแปลงเมื่อร่างกายตอบสนองต่อการอักเสบหรือการกระตุ้นระบบภูมิคุ้มกัน ไม่ว่าจะเกิดจากสาเหตุใดก็ตาม CRP จะถูกสร้างขึ้นอย่างรวดเร็ว โดยสามารถตรวจพบการเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญได้ภายในไม่กี่ชั่วโมงหลังจากเกิดสิ่งกระตุ้นการอักเสบ (เช่น ภายใน 4 ชั่วโมงหลังการผ่าตัด) และจะมีความเข้มข้นสูงสุดประมาณ 24 ชั่วโมง ปฏิกิริยานี้เป็นส่วนหนึ่งของการตอบสนองภูมิคุ้มกันโดยกำเนิด(innate immunity) ซึ่งหมายถึงการตอบสนองที่รวดเร็วและไม่จำเพาะ และสามารถเกิดขึ้นได้จากกระบวนการใด ๆ ที่ทำให้ร่างกายสัตว์เกิดความเสียหาย [1] หลังจากที่เราใช้และให้บริการตรวจค่า CRP มาเป็นเวลากว่า 20 ปีในห้องปฏิบัติการของเรา เราพบว่าสัตวแพทย์ที่ใช้ CRP เป็นประจำมักมองว่า CRP เป็นหนึ่งในตัวบ่งชี้การอักเสบที่สำคัญที่สุด การทดสอบ CRP ถูกใช้เป็นส่วนหนึ่งของชุดการตรวจวิเคราะห์พื้นฐาน สำหรับการตรวจสุขภาพเป็นระยะ การวินิจฉัยโรค การติดตามผลการรักษา และการพยากรณ์โรคจากภาวะการอักเสบ บทความนี้จะให้ข้อมูลล่าสุดและตัวอย่างการใช้จริงเกี่ยวกับการใช้ CRP ในการปฏิบัติทางคลินิก โดยอ้างอิงจากแนวทาง 7 ประเด็นสำคัญที่เคยกำหนดไว้สำหรับการใช้ CRP ในสัตว์เลี้ยง [1]


ใช้วิธีทดสอบที่ได้รับการตรวจสอบแล้วเสมอ


ทุกวิธีการที่ใช้วัด CRP ในทางปฏิบัติ ต้องได้รับการตรวจสอบความถูกต้องเพื่อให้มั่นใจได้ว่าผลลัพธ์ที่ได้สามารถเชื่อถือได้ ปัจจุบันมีผู้ผลิตหลายรายที่ให้บริการการทดสอบในคลินิก (benchtop) ที่ออกแบบเฉพาะสำหรับสุนัข และห้องปฏิบัติการพยาธิวิทยาขนาดใหญ่ก็ให้บริการทดสอบเช่นกัน แม้ว่าการทดสอบของมนุษย์บางชนิดอาจไม่เหมาะกับสุนัข แต่บางชนิดสามารถใช้ได้และมีค่าใช้จ่ายที่ประหยัด อย่างไรก็ตาม แนะนำให้ใช้การทดสอบที่มีการมาตรฐาน (standardization) โดยใช้โปรตีนบริสุทธิ์หรือซีรั่มระยะเฉียบพลันที่มาจากสุนัข และใช้ตัวอย่างควบคุมที่มาจากสุนัขเช่นกัน

สามารถใช้ซีรั่ม พลาสมาที่ผสม EDTA หรือเฮพารินสำหรับวัด CRP ได้ และเนื่องจากโปรตีนนี้ค่อนข้างคงตัว ตัวอย่างสามารถแช่เย็นได้นานหลายวัน หรือแช่แข็งเพื่อเก็บระยะยาว สิ่งสำคัญคือต้องทราบผลของภาวะเม็ดเลือดแดงแตก ไขมันในเลือดสูง และบิลิรูบินสูงต่อค่าที่ได้ เพราะผลกระทบอาจแตกต่างกันขึ้นกับวิธีที่ใช้ ในห้องปฏิบัติการของเรา ค่าอ้างอิงของ CRP ในสุนัขปกติคือ ต่ำกว่า 12 mg/L แม้ว่าค่านี้อาจแตกต่างกันบ้างระหว่างห้องแล็บ แต่โดยทั่วไปจะไม่เกิน 20 mg/L ไม่มีความแตกต่างชัดเจนของค่าอ้างอิงที่เกิดจากอายุหรือเพศ อย่างไรก็ตาม ในสุนัขท้อง CRP จะเพิ่มขึ้นเมื่อครบ 21 วันหลังผสม ซึ่งสอดคล้องกับช่วงที่ตัวอ่อนฝังตัวในมดลูก 

 

สามารถใช้ APP อื่นร่วมกับ CRP ได้
 
ความเป็นไปได้ในการใช้ CRP ร่วมกับ APP อื่น ๆ จะกล่าวถึงในลำดับถัดไป แต่ก่อนอื่นจะขออธิบายลักษณะของ APP ชนิดต่าง ๆ โดย APP ที่มีความเข้มข้นเพิ่มขึ้นหลังจากได้รับสิ่งกระตุ้นการอักเสบ เรียกว่า Positive APPs ในขณะที่ APP ที่ความเข้มข้นลดลงหลังสิ่งกระตุ้นการอักเสบ เรียกว่า Negative APPs (ดูภาพที่ 1)

 

Positive APPs สามารถแบ่งย่อยได้เป็น 2 กลุ่ม คือ กลุ่ม major และ กลุ่ม moderate

 

  • Major APPs ในสุนัข ได้แก่ CRP และ serum amyloid A (SAA) ซึ่งโปรตีนเหล่านี้จะมีระดับต่ำในสัตว์ที่ปกติ แต่สามารถเพิ่มขึ้นได้ 10 ถึง100 เท่าเมื่อได้รับสิ่งกระตุ้น
  • Moderate APPs ได้แก่ haptoglobin (Hp) ferritin และ fibrinogen โดยความเข้มข้นจะเพิ่มขึ้น 2 ถึง 10 เท่าหลังการกระตุ้น
     

 

Major APPs จะมีความเข้มข้นเพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วและลดลงอย่างชันภายในเวลาไม่กี่ชั่วโมง ขณะที่ moderate APPs จะใช้เวลานานกว่าในการเพิ่มและกลับสู่ระดับปกติ

 

Albumin และ paraoxonase-1 (PON-1) เป็นตัวอย่างของ Negative APPs โดยระหว่างการอักเสบ ความเข้มข้นของอัลบูมินในซีรั่มจะลดลง ซึ่งอาจเป็นเพราะอัลบูมินเป็นโปรตีนที่พบมากที่สุดในซีรั่ม และการลดลงนี้ช่วยส่งเสริมการสร้างโปรตีนอื่นที่เกี่ยวข้องกับการอักเสบ ส่วน PON-1 มีหน้าที่เป็นสารต้านอนุมูลอิสระ การลดลงของมันในกระบวนการอักเสบอาจเกิดจากออกซิเดชัน (oxidative stress) ที่เกิดขึ้น ทำให้โปรตีนนี้ถูกใช้ไป

1
ภาพที่ 1 แผนภาพแสดงลักษณะการเปลี่ยนแปลงของกลุ่มโปรตีนระยะเฉียบพลัน (Acute Phase Proteins; APPs) ต่าง ๆ หลังจากได้รับสิ่งกระตุ้นการอักเสบ (ลูกศรสีแดง) และหลังจากที่การอักเสบสิ้นสุดลง (ลูกศรสีเขียว)
CRP สำหรับการติดเชื้อและการอักเสบ

เหตุผลหลักในการใช้การทดสอบ CRP คือ เพื่อยืนยันหรือแยกแยะการมีอยู่ของกระบวนการอักเสบหรือการติดเชื้อ ในขณะที่เครื่องมือที่ใช้กันแพร่หลายที่สุดในการตรวจหาการอักเสบคือ การประเมินจำนวนเม็ดเลือดขาว (WBCs) แต่ในอุดมคติแล้ว ควรทำการวัดและตีความค่า CRP ควบคู่กันไปด้วย นอกจากนี้ CRP ยังมีข้อดีหลายประการเหนือกว่า WBCs ในการตรวจหาและประเมินความรุนแรงของการอักเสบ เพราะ CRP มี ความไวกว่า ตัวอย่างเช่น มีรายงานว่า CRP ทำให้พบความผิดปกติได้ไวกว่า ในกรณี babesiosis (ดูภาพที่ 2) [3] หรือในขั้นตอนการผ่าตัดต่าง ๆ [4] ซึ่งสิ่งนี้มีความสำคัญอย่างยิ่งในกรณีที่ไขกระดูกทำงานลดลง นอกจากนี้ CRP ยังมีความคงตัวสูง ทำให้สามารถเก็บตัวอย่างได้ในระยะยาว ซึ่งต่างจาก WBCs

 

2
ภาพที่ 2. ปรสิต Babesia canis ภายในเม็ดเลือดแดงของสุนัข Babesiosis เป็นโรคที่ค่า CRP สามารถเพิ่มขึ้นก่อนที่อาการทางคลินิกจะปรากฏ และโรคนี้ยังทำให้โปรตีนระยะเฉียบพลันมีการเปลี่ยนแปลงในทิศทางที่ต่างกัน โดยค่า CRP จะเพิ่มขึ้น ในขณะที่ระดับ Hp ลดลง (เครดิตภาพ: Shutterstock)

แม้ว่าระดับ CRP ที่สูงขึ้นจะมีประโยชน์มากในการตรวจหาการอักเสบในสุนัข แต่สิ่งสำคัญคือต้องทราบว่า CRP ที่อยู่ในค่ามาตรฐานอ้างอิงก็เป็นข้อมูลสำคัญทางคลินิกเช่นกัน เนื่องจากบ่งบอกถึงการขาดกระบวนการอักเสบหรือการติดเชื้อเฉียบพลัน นอกเหนือจากการตรวจพบหรือแยกแยะการอักเสบแล้ว CRP ยังสามารถให้ข้อมูลเพิ่มเติมสำหรับสัตวแพทย์ ดังแสดงในตารางที่ 1

 

ตารางที่ 1. CRP ให้ข้อมูลอะไรได้บ้าง นอกเหนือจากการตรวจหาการอักเสบ?

ข้อมูล ตัวอย่าง
Evaluate the severity of the inflammation or inflammatory disease. This is because increases in CRP are usually related to the magnitude of the inflammation.
  • In dogs infected with Ehrlichia canis, those with myelosuppression have higher CRP values compared to those with the uncomplicated disease [5].
  • In surgery, CRP has higher concentrations where there is more severe tissue injury [4].
การเพิ่มขึ้นของ CRP ในภาวะที่ปกติแล้วค่าจะอยู่ในช่วงอ้างอิง อาจบ่งบอกถึงการเกิดภาวะแทรกซ้อนหรือรูปแบบของโรคที่รุนแรง
  • ในกรณีที่เป็นเนื้องอกเต้านมชนิดไม่ร้ายแรงหรือชนิดไม่แพร่กระจาย (benign หรือ non-metastatic mammary tumors) ค่าของ CRP มักอยู่ในช่วงอ้างอิง ในขณะที่ ค่าของ CRP มีแนวโน้มเพิ่มขึ้นในกรณีที่ตรวจพบลักษณะของเนื้องอกร้าย การแพร่กระจาย หรือการอักเสบเฉพาะที่ทางจุลพยาธิวิทยา (ดูภาพที่ 5) [6] ในทำนองเดียวกัน ในโรค lymphoma ค่าของ CRP ที่สูงขึ้นสัมพันธ์กับระยะที่โรคลุกลามและการแพร่กระจายของโรค [7] 
  • ในกรณี โรคขี้เรื้อนสุนัข (canine demodicosis) ที่เป็นชนิดเฉพาะที่ ค่าของ CRP จะอยู่ในช่วงอ้างอิง แต่ ในชนิดทั่วตัวค่าของ CRP จะเพิ่มขึ้น ซึ่งสามารถช่วยแยกแยะได้ว่ากรณีใดเป็นชนิดเฉพาะที่หรือชนิดทั่วตัว [8]
  • ในสุนัขที่เป็น โรคลำไส้อักเสบเรื้อรัง (IBD) ค่าของ CRP มักอยู่ในช่วงอ้างอิงหรือเพิ่มขึ้นเพียงเล็กน้อย [9],[10] ดังนั้นหากพบการเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ จะบ่งบอกถึงภาวะแทรกซ้อนของโรคนี้

โปรตีนระยะเฉียบพลันชนิด (Major Acute Phase Proteins; APPs) จะมีความเข้มข้นเพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วและลดลงอย่างชัน โดยปกติภายในไม่กี่ชั่วโมง ในขณะที่ APPs ชนิด moderate จะใช้เวลานานกว่าในการเพิ่มขึ้นและกลับสู่ระดับปกติ

โฮเซ เซรอน

CRP อาจช่วยระบุสาเหตุของการอักเสบได้

แม้ว่า CRP ไม่สามารถระบุสาเหตุของการอักเสบได้ เนื่องจากมีลักษณะไม่จำเพาะ แต่ ระดับความรุนแรงของการเพิ่มขึ้นของ CRP สามารถช่วยกำหนดขอบเขตของสาเหตุที่เป็นไปได้ และช่วยชี้แนวทางการวินิจฉัย (ดูตารางที่ 2; ภาพที่ 3) สิ่งนี้สามารถนำไปสู่การประยุกต์ใช้ในทางปฏิบัติหลายรูปแบบ ดังที่แสดงในตารางที่ 3 นอกจากนี้ ยังมีสถานการณ์ที่สำคัญซึ่ง CRP สามารถช่วยในการแยกแยะสาเหตุของปัญหาได้อย่างมีประสิทธิภาพ เช่น 

 

  • โรคในโพรงจมูก ค่าของ CRP ที่เพิ่มขึ้นเล็กน้อยพบได้ในกรณีของ aspergillosis rhinitis ไม่จำเพาะ หรือเนื้องอก [17]อย่างไรก็ตาม ถ้าพบว่าค่า CRP เพิ่มสูงมากในสุนัขที่มีอาการของโรคโพรงจมูก (ดูภาพที่ 4) อาจบ่งบอกถึง ปัญหาการอักเสบที่สำคัญทางคลินิกซ่อนอยู่
  • โรคทางเดินอาหาร (GI disease) บางภาวะที่ทำให้เกิดอาการทางเดินอาหารเรื้อรังในสุนัข เช่น โรคลำไส้อักเสบเรื้อรัง (IBD) การติดพยาธิ ท้องเสียที่ตอบสนองต่อการเปลี่ยนอาหารหรือยาปฏิชีวนะ (dietary and antibiotic responsive diarrhea) เนื้องอกในทางเดินอาหาร หรือความผิดปกติของการเคลื่อนไหวลำไส้ มักไม่พบว่ามีค่า CRP เพิ่มสูงมาก [9] นอกจากนี้ การดูดซึมผิดปกติที่เกิดจากภาวะตับอ่อนทำงานบกพร่อง (exocrine pancreatic insufficiency) ภาวะลำไส้ไวต่อข้าวสาลี (wheat-sensitive enteropathy) หรือ การเจริญเติบโตเกินของแบคทีเรียในลำไส้ที่ไม่ใช้ออกซิเจน ก็มีรายงานว่า ไม่ทำให้ค่า CRP ในสุนัขเพิ่มสูงขึ้น [18] ดังนั้น หากพบว่าค่า CRP เพิ่มสูงอย่างชัดเจนในโรคเหล่านี้ อาจบ่งบอกถึง การมีภาวะอักเสบในร่างกายอื่นร่วมด้วย

 

ตารางที่ 2. การตีความทางคลินิกของขนาดการเพิ่มขึ้นของ CRP ในซีรั่มของสุนัข (จาก [11])

 CRP (mg/L)    ความเห็นทางคลินิก
 0-12 ปกติ (ช่วงอ้างอิงอาจแตกต่างกันขึ้นกับห้องปฏิบัติการ)
 12-20

เพิ่มขึ้นเล็กน้อย ซึ่งอาจไม่มีคุณค่าการวินิจฉัยที่ชัดเจน

 

  • การอักเสบเล็กน้อยมาก
  • โรคทางเดินอาหารที่ไม่ซับซ้อน
  • โรคโพรงจมูกที่ไม่ซับซ้อน
 20-39

ระดับเพิ่มขึ้น:

  • การอักเสบเล็กน้อย
  • โรคไวรัสที่ไม่ซับซ้อน
 40-100

ระดับเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ:

 

  • ระดับเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ
  • โรคขี้เรื้อนสุนัขชนิดทั่วตัว
  • อาจพบการแพร่กระจาย (ในกรณีเนื้องอก เช่น เนื้องอกเต้านมหรือ lymphoma)
 > 100

การอักเสบรุนแรง

  • กลุ่มอาการตอบสนองการอักเสบทั่วร่างกาย / ภาวะติดเชื้อในกระแสเลือด (SIRS/septicemia)
  • ความผิดปกติจากภูมิคุ้มกัน (เช่น steroid-responsive meningitis-arteritis, immune-mediated hemolytic anemia, immune-mediated polyarthritis)


ตารางที่ 3. ประโยชน์ที่เป็นไปได้ของ CRP ในการลดขอบเขตของสาเหตุและชี้แนวทางการวินิจฉัย

 

การประยุกต์ใช้และคำอธิบาย ตัวอย่าง
เมื่อสงสัยการติดเชื้อในกระแสเลือด (sepsis) หรือโรคจากภูมิคุ้มกัน การเพิ่มขึ้นของ CRP มากกว่า 100 mg/L มักสัมพันธ์กับ SIRS ซึ่งหากพบวัฒนธรรมเชื้อแบคทีเรียเป็นบวก อาจบ่งบอกถึงการติดเชื้อในกระแสเลือด หรืออาจเกิดจากโรคที่เกี่ยวกับภูมิคุ้มกัน
  • ในสุนัขที่มีอาการทางคลินิกของโรคระบบทางเดินหายใจ พบว่าปอดบวมจากแบคทีเรียสามารถระบุได้ด้วยความจำเพาะ 100% เมื่อระดับ CRP เกิน 100 mg/L
  • ในสุนัขที่ติดเชื้อ parvovirus ระดับ CRP ที่อยู่ราว ๆ หรือมากกว่า 100 mg/L อาจบ่งบอกถึงภาวะแทรกซ้อนจากการติดเชื้อในกระแสเลือด (septicemia)
สงสัยสาเหตุที่เกี่ยวข้องกับการติดเชื้อและการอักเสบ เมื่ออาการทางคลินิกอาจเกิดจากปัจจัยที่เกี่ยวข้องกับการอักเสบหรือไม่เกี่ยวข้องกับการอักเสบ
  • ในกรณี ขาลากหรือเดินกะเผลก (lameness) ค่า CRP สามารถช่วยแยกแยะระหว่าง immune-mediated polyarthritis กับ osteoarthritis เป็นต้น
  • ในสุนัขที่มี อาการทางระบบประสาท การเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญของค่า CRP อาจช่วยในการวินิจฉัย steroid-responsive meningitis-arteritis
  • ในกรณี pyometra ค่าของ CRP สามารถช่วยแยกแยะจาก cystic endometrial hyperplasia/mucometra (CEH)

 

ประเด็นนี้กล่าวถึงเฉพาะการใช้ CRP เป็นการตรวจเดี่ยว แต่ในส่วนถัดไปจะมีตัวอย่างเพิ่มเติมเกี่ยวกับการใช้ CRP ร่วมกับ APP อื่นเพื่อช่วยระบุสาเหตุของโรคบางประเภท

3
ภาพที่ 3. ขนาดของการเพิ่มขึ้นของระดับ CRP มีความสัมพันธ์กับความรุนแรงของการตอบสนองของระบบภูมิคุ้มกัน
4
ภาพที่ 4. การตรวจพบค่า CRP ที่เพิ่มสูงอย่างชัดเจนในสุนัขที่มีอาการของโรคโพรงจมูก อาจบ่งบอกถึงปัญหาการอักเสบที่แฝงอยู่(เครดิตภาพ: Shutterstock)

CRP ช่วยในการติดตามการตอบสนองต่อการรักษา

การที่ค่าของ CRP กลับเข้าสู่ระดับปกติในโรคติดเชื้อหรืออักเสบ บ่งบอกว่าสุนัขตอบสนองต่อการรักษาได้ดี และมักหมายถึงการพยากรณ์โรคที่ดี สิ่งนี้ได้รับการพิสูจน์แล้วในโรคอักเสบหลายโรค เช่น ตับอ่อนอักเสบเฉียบพลัน ซึ่ง CRP เป็นเครื่องมือที่มีประโยชน์ในการติดตามความคืบหน้าทางคลินิกและการตอบสนองต่อการรักษา [19] CRP ยังแสดงให้เห็นว่ามีความแม่นยำมากกว่า WBC ในการสะท้อนความรุนแรงของการอักเสบหลังการรักษา ในโรคเช่น immune-mediated polyarthritis โดยสามารถบ่งบอกช่วงของการกำเริบและการสงบของโรค [20]

ตัวอย่างการตีความ:

 

  • การตอบสนองที่ดี → ค่า CRP ลดลง: หากค่า CRP เริ่มต้นสูง การกลับสู่ช่วงอ้างอิงพร้อมกับการดีขึ้นทางคลินิกบ่งบอกว่าสามารถหยุดการรักษาได้ วิธีนี้สามารถช่วยปรับการให้ยาปฏิชีวนะได้อย่างเหมาะสม เช่น ในการศึกษาสุนัขที่เป็น ปอดบวมจากแบคทีเรีย ระยะเวลาในการให้ยาปฏิชีวนะลดลงอย่างมากเมื่อใช้การกลับสู่ค่าปกติของ CRP เป็นเกณฑ์ในการหยุดการรักษา [21] ในการศึกษานี้ ยาปฏิชีวนะถูกหยุดให้ 5–7 วันหลังจากค่า CRP กลับสู่ปกติ ต่างจากวิธีดั้งเดิมที่ให้ยาต่อเนื่อง 1–2 สัปดาห์หลังความหนาแน่นของถุงลมปกติในภาพถ่ายรังสีทรวงอก การลดระยะเวลานี้ไม่ได้เพิ่มอัตราการกลับเป็นซ้ำ
  • การตอบสนองไม่ดี → ค่า CRP ลดลงน้อยหรือไม่ลดเลย: หากค่า CRP ไม่ลดหลังการรักษา บ่งบอกว่าอาจมีความผิดพลาดในการวินิจฉัยหรือการรักษา ซึ่งควรทำการประเมินผู้ป่วยใหม่อย่างละเอียด สิ่งนี้สามารถถือเป็น สัญญาณเตือน (red-light alert) ได้ ตัวอย่างเช่น หลังการผ่าตัด ค่าของ CRP โดยปกติจะต่ำเมื่อถึงเวลาถอดไหม [4] ดังนั้นหากพบว่าค่า CRP เพิ่มขึ้นในช่วงหลังผ่าตัด อาจบ่งบอกถึงการเกิดภาวะแทรกซ้อน เช่น การติดเชื้อที่แผลผ่าตัด ซึ่งอาจพบหลังการผ่าตัดรักษา pyometra

 

CRP สามารถทำนายการมีอยู่ของโรคอักเสบหรือติดเชื้อได้

ด้วยความไวสูงและการตอบสนองที่รวดเร็ว CRP สามารถตรวจพบการอักเสบในระยะที่ยังไม่แสดงอาการ (subclinical inflammation) เนื่องจากค่า APP จะเปลี่ยนแปลงก่อนที่อาการทางคลินิกจะเกิดขึ้น ดังนั้นโปรตีนนี้จึงเหมาะอย่างยิ่งสำหรับการตรวจสุขภาพประจำ ที่สามารถพบการเพิ่มขึ้นของ APP ในสัตว์ที่ดูเหมือนปกติ ซึ่งอาจบ่งบอกถึงการมีโรคที่ยังไม่แสดงอาการ หรือทำนายการเกิดโรคที่กำลังจะเกิดขึ้นได้ ตัวอย่างเช่น ในการศึกษาสุนัขติดเชื้อ Babesia gibsoni พบว่ามีระดับ CRP สูง แม้จะยังไม่แสดงอาการทางคลินิกหรือไม่พบพยาธิในเลือด [22] ในทำนองเดียวกัน สุนัขที่ติดเชื้อ Leishmania infantum โดยไม่แสดงอาการ พบว่ามีค่า CRP สูง ซึ่งอาจคาดการณ์ได้ว่าสุนัขเหล่านี้จะพัฒนาเป็นโรคแสดงอาการในระยะถัดไป [23]

Gloved hand examining the nipple of a long-haired dog, ensuring proper health and care.
ภาพที่ 5.เนื้องอกเต้านมไม่สามารถแยกแยะว่าเป็นชนิดร้ายหรือไม่ร้ายได้จากการตรวจร่างกายเพียงอย่างเดียว อย่างไรก็ตาม ค่าของ CRP มักอยู่ในช่วงอ้างอิงในกรณีเนื้องอกชนิดไม่ร้ายหรือไม่แพร่กระจาย ขณะที่มีแนวโน้มเพิ่มขึ้นในกรณีที่มีการแพร่กระจาย การอักเสบเฉพาะที่ หรือมีลักษณะทางจุลพยาธิวิทยาที่บ่งชี้ถึงความเป็นมะเร็ง(เครดิตภาพ: Shutterstock)

โปรไฟล์APPs ในอนาคต

ความแตกต่าง (divergence) ระหว่าง APPs ชนิด major และ moderate สามารถให้ข้อมูลทางคลินิกที่เป็นประโยชน์ ดังนั้น หากเป็นไปได้ แนะนำให้ใช้โปรไฟล์ห้องปฏิบัติการที่รวมอย่างน้อย APP major 1 ตัว และ APP moderate 1 ตัว คำว่า “divergence” หมายถึง สถานการณ์ที่ APP ของทั้งสองกลุ่มไม่เปลี่ยนแปลงตามที่คาดไว้เมื่อมีสิ่งกระตุ้นการอักเสบ ตัวอย่างที่เกี่ยวข้อง

 

  • ↑ Hp และ ↔ CRP (ความเข้มข้นของ Hp เพิ่มขึ้น แต่ค่า CRP อยู่ในช่วงอ้างอิง) เนื่องจาก CRP มักเพิ่มขึ้นมากกว่า Hp ในสถานการณ์ที่มีการอักเสบ การพบโปรไฟล์นี้ในสุนัขที่ไม่มีประวัติได้รับกลูโคคอร์ติคอยด์ อาจบ่งบอกถึงการสร้างสเตียรอยด์ภายในที่เพิ่มขึ้น (endogenous steroids) เพราะกลูโคคอร์ติคอยด์กระตุ้นให้ Hp เพิ่มขึ้น และทำให้ CRP ลดลง [24] รูปแบบนี้อาจใช้เป็นตัวบ่งชี้ hyperadrenocorticism (Cushing’s disease) ได้ หากสุนัขที่ได้รับการวินิจฉัยว่าเป็น Cushing’s พบว่า CRP เพิ่มขึ้น แสดงว่ามีสิ่งกระตุ้นการอักเสบรุนแรงที่สามารถเอาชนะฤทธิ์ยับยั้งของสเตียรอยด์ภายในได้ ซึ่งอาจต้องตรวจสอบภาวะแทรกซ้อนจากการอักเสบ เช่น sepsis รุนแรง, การติดเชื้อทางเดินปัสสาวะ, pyoderma ลึก, mastitis รุนแรง หรือ anemia จากภูมิคุ้มกัน [24] 

 

  • ↔ Hp และ ↑ CRP (Hp คงที่หรือลดลง แต่ CRP เพิ่มขึ้น) รูปแบบนี้อาจบ่งบอกถึง hemolysis หรือ เลือดออกภายในที่นำไปสู่ hemolysis เนื่องจาก Hp จะจับกับฮีโมโกลบินที่หลุดจากเม็ดเลือดแดงที่เสียหาย เพื่อช่วยในการย่อยสลายและป้องกันความเครียดออกซิเดชัน ดังนั้น Hp จึงอาจถูกใช้หมดหลัง hemolysis ตัวอย่างเช่น ในสุนัขที่ติดเชื้อ B. canis ตามธรรมชาติ พบว่า CRP เฉลี่ยเพิ่มขึ้น (170 mg/L) ขณะที่ Hp เฉลี่ยอยู่ในช่วงอ้างอิง (2.7 g/L) ค่าของ Hp อาจสะท้อนผลผสมระหว่างการอักเสบที่ทำให้ Hp เพิ่มขึ้นระดับปานกลาง และ hemolysis ที่ทำให้ Hp ลดลง [3] 

 

  • ↑ CRP และ ↔ Ferritin (CRP เพิ่มขึ้น แต่ ferritin อยู่ในช่วงอ้างอิง) ในกรณีมดลูกอักเสบ (pyometra) ของสุนัข พบว่า CRP ในซีรั่มเพิ่มขึ้นอย่างชัดเจน สะท้อนถึงภาวะการอักเสบรุนแรง แต่ ferritin ในซีรั่ม ซึ่งเป็น APP ชนิด moderate กลับไม่เพิ่มขึ้น ความแตกต่างของ APP แบบนี้อาจเป็นเครื่องมือที่มีประโยชน์ในการสงสัยโรคนี้ [25] 

แม้ว่าเครื่องมือที่ใช้กันอย่างแพร่หลายที่สุดในการตรวจหาการอักเสบคือ การประเมินจำนวนเม็ดเลือดขาว แต่ถ้าจะให้ดีที่สุด ควรวัดและตีความค่า CRP ไปพร้อมกัน

แอสตา ทวาริโยนาวิซูเต

บทสรุป

CRP เป็นเครืองมือวินิจฉัยที่มีคุณค่าในการตรวจรักษาประจำในสุนัข และเป็นการทดสอบที่ยอดเยี่ยมสำหรับทั้งในกรณีโรคและการตรวจสุขภาพประจำ ความคาดหวังคือ ข้อมูลในบทความนี้จะช่วยให้สัตวแพทย์ที่ใช้ CRP อยู่แล้วสามารถใช้ประโยชน์ได้สูงสุด และส่งเสริมให้ผู้ที่ยังไม่คุ้นเคยกับ CRP พิจารณาการนำไปใช้ [1]

คำชี้แจงความขัดแย้งทางผลประโยชน์

ผู้เขียนทั้งสองไม่มีความสัมพันธ์ทางการเงินหรือส่วนตัวกับบุคคลหรือองค์กรใด ที่อาจส่งผลกระทบหรือทำให้เนื้อหาของบทความมีอคติ

คำขอบคุณ

ผู้เขียนขอมอบผลงานนี้แด่ Dr. Marco Caldin หนึ่งในผู้บุกเบิกและผู้มีบทบาทสำคัญในการประยุกต์ใช้ CRP ในการปฏิบัติทางสัตวแพทย์ในสุนัข วิสัยทัศน์ ความรู้ และมรดกทางวิชาการของเขายังคงเป็นแรงบันดาลใจให้พวกเราและนักวิจัยท่านอื่น ๆ อีกมากมายในสาขานี้

ผู้เขียนยังขอขอบคุณ Silvia Martinez-Subiela สำหรับคำแนะนำและความช่วยเหลือในการเตรียมต้นฉบับบทความนี้

 

 

Jose Ceron

โฮเซ เซรอน (José Cerón)


DVM, PhD, Dip. ECVCP ห้องปฏิบัติการวิเคราะห์ทางคลินิกสหสาขาวิชา (Interlab-UMU), มหาวิทยาลัย Murcia, ประเทศสเปน

ดร. เซรอน เป็นศาสตราจารย์ประจำคณะสัตวแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัย Murcia และเป็น Diplomate ของ European College of Veterinary Clinical Pathology เขาดำรงตำแหน่งหัวหน้าห้องปฏิบัติการวินิจฉัยทางสัตวแพทย์ของมหาวิทยาลัย Murcia (INTERLAB-UMU) ซึ่งให้บริการตรวจวิเคราะห์เป็นประจำแก่โรงพยาบาลสัตว์สอน ผู้ปฏิบัติงานภายนอก และบริษัทเอกชน เขาเคยดำรงตำแหน่งประธาน European Society of Veterinary Clinical Pathology และได้ตีพิมพ์บทความมากกว่า 400 เรื่องเกี่ยวกับการวิเคราะห์ทางห้องปฏิบัติการในวารสารนานาชาติ

 

Asta Tvarijonaviciute

แอสตา ทวาริโยนาวิซูเต (Asta Tvarijonaviciute)


DVM, PhD ห้องปฏิบัติการวิเคราะห์ทางคลินิกสหสาขาวิชา (Interlab-UMU), มหาวิทยาลัย Murcia, ประเทศสเปน
Spain


ดร. ทวาริโยนาวิซูเต ปัจจุบันเป็นอาจารย์ประจำด้านเวชศาสตร์สัตว์เล็ก ที่โรงพยาบาลสัตวแพทย์สอน มหาวิทยาลัย Murcia เธอได้รับการรับรองด้านอายุรกรรมจากสมาคมสัตวแพทย์ผู้เชี่ยวชาญสัตว์เล็กแห่งสเปน (Spanish Association of Veterinarians Specialists in Small Animals) และมีความสนใจด้านการวิจัยที่เน้นการประยุกต์ใช้ biomarker เพื่อการประเมินสุขภาพในทางคลินิก
อ้างอิง
  1. Cern JJ. Acute phase proteins, saliva and education in laboratory science: an update and some reflections. BMC Vet. Res. [Internet]. 2019;15(1):197. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31189466/
  2. Muoz Prieto A, Tvarijonaviciute A, Escribano D, et al. Use of heterologous immunoassays for quantification of serum proteins: The case of canine C-reactive protein. PLoS One 2017;12(2);e0172188. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28222144
  3. Matijatko V, Mrljak V, Ki I, et al. Evidence of an acute phase response in dogs naturally infected with Babesia canis. Vet. Parasitol. 2007;144(3-4):242-250. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17116368/
  4. Yamamoto S, Shida T, Miyaji S, et al. Changes in serum C-reactive protein levels in dogs with various disorders and surgical traumas. Vet. Res. Commun. 1993;17(2):85-93. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8212527/
  5. Mylonakis ME, Cern JJ, Leontides L, et al. Serum acute phase proteins as clinical phase indicators and outcome predictors in naturally occurring canine monocytic ehrlichiosis. J. Vet. Intern. Med. 2011;25(4):811-817. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21564293/
  6. Tecles F, Caldn M, Zanella A, et al. Serum acute phase protein concentrations in female dogs with mammary tumors. J. Vet. Diagn. Invest. 2009;21(2):214-219. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19286500/
  7. Manachai N, Umnuayyonvaree D, Punyathi P, et al. Impact of serum C-reactive protein level as a biomarker of cancer dissemination in canine lymphoid neoplasia. Vet. World 2022;15(12):2810-2815. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/36718344
  8. Martnez-Subiela S, Bernal LJ, Tvarijonaviciute A, et al. Canine demodicosis: the relationship between response to treatment of generalized disease and markers for inflammation and oxidative status. Vet. Dermatol. 2014;25(2):72-76, e23-4. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24800264/
  9. McCann TM, Ridyard AE, Else RW, et al. Evaluation of disease activity markers in dogs with idiopathic inflammatory bowel disease. J. Small Anim. Pract. 2007;48(11):620-625.
  10. Segarra S, Martnez-Subiela S, Cerd-Cullar M, et al. Oral chondroitin sulfate and prebiotics for the treatment of canine inflammatory bowel disease: A randomized, controlled clinical trial. BMC Vet. Res. 2016;10:12(1);49.
  11. Cern JJ, Martinez-Subiela S, Tecles F, et al. Acute phase proteins in diagnostics: more than expected. J. Hellenic Vet. Med. Soc. 2017;65(3):197-204. Available from: https://ejournals.epublishing.ekt.gr/index.php/jhvms/article/view/15535
  12. Viitanen SJ, Laurila HP, Lilja-Maula LI, et al. Serum C-reactive protein as a diagnostic biomarker in dogs with bacterial respiratory diseases. J. Vet. Intern. Med. 2014;28(1):84-91. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24351049/
  13. Kocaturk M, Martinez S, Eralp O, et al. Prognostic value of serum acute-phase proteins in dogs with parvoviral enteritis. J. Small Anim. Pract. 2010;51(9):478-483. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20630018/
  14. Ohno K, Yokoyama Y, Nakashima K, . C-reactive protein concentration in canine idiopathic polyarthritis. J. Vet. Med. Sci. 2006;68(12):1275-1279. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17213695/
  15. Bathen-Noethen A, Carlson R, Menzel D, et al. Concentrations of acute-phase proteins in dogs with steroid responsive meningitis-arteritis. J. Vet. Intern. Med. 2008;22(5):1149-1156. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18691368/
  16. Fransson BA, Karlstam E, Bergstrom A, et al. C-reactive protein in the differentiation of pyometra from cystic endometrial hyperplasia/mucometra in dogs. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 2004;40(5):391-399. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15347619/
  17. Sheahan D, Bell R, Mellanby RJ, et al. Acute phase protein concentrations in dogs with nasal disease. Vet. Rec. 2010;167(23):895-899. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21262672/
  18. Caspi D, Snel FW, Batt RM, et al. C-reactive protein in dogs. Am. J. Vet. Res. 1987;48(6):919-921.
  19. Holm JL, Rozanski EA, Freeman LM, et al. C-reactive protein concentrations in canine acute pancreatitis. J. Vet. Emerg. Crit. Care. 2004;14(3):183-186. Available from: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/full/10.1111/j.1534-6935.2004.04010.x
  20. Kjelgaard-Hansen M, Jensen A, Houser GA, et al. Use of serum C-reactive protein as an early marker of inflammatory activity in canine type II immune-mediated polyarthritis: case report. Acta Vet. Scand. 2006;48(1);9. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16987405/
  21. Viitanen SJ, Lappalainen AK, Christensen MB, et al. The utility of acute-phase proteins in the assessment of treatment response in dogs with bacterial pneumonia. J. Vet. Intern. Med. 2017;31(1):124-133. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28032360/
  22. Suzuki K, Wakabayashi H, Takahashi M, et al. A possible treatment strategy and clinical factors to estimate the treatment response in Babesia gibsoni infection. J. Vet. Med. Sci. 2007;69(5):563-568. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17551236/
  23. Cern JJ, Pardo-Marin L, Caldin M, et al. Use of acute phase proteins for the clinical assessment and management of canine leishmaniosis: general recommendations. BMC Vet. Res. 2018;14(1):196. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29925385/
  24. Caldin M, Tasca S, Carli E, et al. Serum acute phase protein concentrations in dogs with hyperadrenocorticism with and without concurrent inflammatory conditions. Vet. Clin. Pathol. 2009;38(1):63-68. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19228354/
  25. Cern JJ, Pardo-Marin L, Wdowiak A, et al. Divergences between serum C-reactive protein and ferritin concentrations in canine pyometra. BMC Vet. Res. 2023;19(1):1-6. Available from: https://bmcvetres.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12917-023-03630-3
Access the PDF of the issue

แบ่งปันบนโซเชียลมีเดีย